胸腺素a1抗體的制備及其效價測定
【摘要】 目的 制備用于檢測胸腺素α1基因工程表達產物的特異性抗體。方法 以提純的胸腺素α1與牛血清白蛋白偶聯后作為抗原,皮下多點注射免疫大鼠。經過3個月的免疫,獲得抗胸腺素α1的多克隆抗體。結果 用間接酶聯免疫吸附（ELISA）方法,測定抗體效價超過5,000,顯示該抗體能與胸腺素α1抗原特異性地產生明顯免疫反應。結論 采用本法制備的抗體具有很好的靈敏性和特異性。為胸腺素α1的分離純化及大規模，從而為進一步滿足臨床需要奠定了基礎。
【關鍵詞】 胸腺素α1抗體 酶聯免疫吸附反應
胸腺素（Thymosin α1，Tα1）作為一種生物反應調節劑（BRM）〔1～4〕,在臨床中具有良好療效，主要治療乙型肝炎〔5，6〕、丙型肝炎〔7〕及多種惡性腫瘤〔8，9〕，也用于艾滋病等免疫缺陷性疾病的治療。制備Tα1特異性的抗體對于Tα1基因的表達產物的鑒定至關重要。本文用大鼠作為免疫動物,采用皮下多點免疫注射的方法，獲得了滿意的抗Tα1抗體。
1 材料與方法
11 材料與試劑
Tα1購自市售成都地奧九泓制藥廠,規格16 mg/瓶;牛血清白蛋白、*福氏佐劑及不*福氏佐劑、辣根酶標記山羊抗大鼠Ig G（H+L）均購自北京鼎國生物公司;大鼠,雌性，6～8周齡，225～234 g，由吉林大學基礎實驗動物室提供。
12 方法
121 制備偶聯復合體
用pH 74的01 mol/L PBS 緩沖液溶解Tα1和BSA,緩慢加入60%、05 mol/L NaCl,使Tα1的終濃度為01 mg/ml,置于振蕩器中輕微振蕩3 h。
122 制備抗體血清
1221 卡介苗致敏
在動物飼養室內飼養大鼠6只,觀察2 w，其健康狀態良好后,每只大鼠后足掌皮下注射005 ml卡介苗。
1222 第1次免疫注射
卡介苗致敏2 w后,以BSATα1偶聯產物做抗原,與等體積*福氏佐劑充分乳化后,免疫注射。位點在大腿肌肉腹股溝處,每點皮下注射02 ml，陰性對照注射等量生理鹽水。
1223 第2次免疫注射
*次免疫注射2 w后,選擇脊椎兩旁各4個位點,腹股溝各1點,每點02 ml進行皮下免疫注射。
1224 第3次免疫注射
2 w后,免疫注射位點在背部脊柱旁各3個,腹股溝及腋下各1點,每點02 ml。
1225 加強免疫
第3次免疫注射后,每隔20～25 d,以不*福氏佐劑與Tα1BSA偶聯復合物經充分乳化后進行背部多點免疫;zui后1次免疫后的第7天采血,4℃冰箱過夜,離心分離血清。用ELISA法測定其效價,達到要求后,眼球取血,獲得血清,分裝保存在-20℃冰箱備用。
123 抗血清的純化
用硫酸銨鹽沉淀提純抗體〔10～12〕。
1231 鹽析
取分離后獲得的血清與等量生理鹽水混合稀釋,于攪拌下逐滴加入等量的飽和硫酸銨,使其終濃度為50%,4℃冰箱過夜,使其充分沉淀。經離心后棄去上清，以生理鹽水溶解沉淀。再逐滴加入飽和硫酸銨，使其終濃度為33%，4℃冰箱過夜。重復用50%及33%的飽和硫酸銨依次提取。將末次離心后所得沉淀物以002 mol/L PBS溶解后裝入透析袋。
1232 除鹽
將盛裝鹽析物溶液的透析袋置于大燒杯中，在電磁攪拌下，以蒸餾水和生理鹽水交替透析48 h,此過程每隔3～4 h換液。
124 ELISA法測定抗體效價
1241 包被
用pH 96碳酸鹽緩沖液稀釋Tα1至終濃度5 μg/ml,包被酶標板，將酶標板放入濕盒中，置4℃冰箱過夜。
1242 封閉
封閉液用pH 74 PBSTween 20，加5%脫脂奶粉。
1243 加一抗
以pH 74 PBSTween 20奶粉為稀釋液,將免疫后的大鼠陽性血清作不同梯度稀釋;陰性對照用未免疫的大鼠陰性血清。
1244 加酶標二抗
用pH 74 PBSTween 20脫脂奶粉按1∶1 000稀釋酶標二抗山羊抗大鼠HRP。
1245 加底物
加入TMB顯色液,37℃避光顯色15～20 min后,加入2 mol/L H2SO4 終止反應。
1246 讀數
用酶標儀在490 nm波長下讀取吸光值。每次操作間采用浸泡式洗滌方法充分洗滌3次，以除去多余的游離反應物。
13 統計學處理
采用SPSS115軟件包處理數據。
胸腺素a1抗體的制備及其效價測定
2 結果
21 抗體的制備
本次實驗所用大鼠在三個月的免疫過程中狀態良好，無一例死亡，其免疫前后體重變化無明顯差異（P＞005）見表1。免疫結束，每只大鼠眼球取血獲得5～6 ml的免疫血清。表1 免疫前后大鼠體重變化（略）
22 抗體的ELISA檢測
以未免疫的大鼠血清作為對照，用制備的抗體作為一抗進行ELISA檢測,均有陽性反應，均為P/N＞21（P:陽性血清OD490；N：陰性血清OD490）,測得OD值，見表2。表2 ELISA檢測抗體效價（略）
23 勝*提純抗體與未提純抗體的比較
經采用相同針劑、相同條件以提純和未提純的抗體作ELISA檢測,發現提純的抗體其陽性反應明顯比未提純的抗體強。1∶10時，提純抗體與未提純抗體兩組比較P＜001；1∶100、1∶1 000、1∶3 000、1∶5 000時，兩組比較P＜005。證明提純抗體特異性,靈敏度均比未提純的效果好，檢測結果見表3。表3 提純抗體與未提純抗體的比較（略）
Tα1為免疫原性差的小分子量肽，而能分別將藥物與載體蛋白的伯氨基以五肽鏈的橋連接起來〔11〕，Tα1與載體蛋白偶聯后免疫動物,能提高其免疫原性。選擇大鼠做免疫動物的優點是,大鼠活力強,飼養條件要求較低,免疫中途死亡率低，本次實驗所用大鼠在三個月的免疫過程中狀態良好，均未死亡;此外,大鼠個體適中,所需抗原用量不大,而且其體積比小鼠大,收獲血量相對多,制備的血清量大。本實驗采用上述方法，從一只大鼠中可以獲得5～6 ml的免疫血清。此外，制定合理的免疫程序也是獲得理想抗體的關鍵，抗原免疫前使用卡介苗致敏,能夠明顯調動大鼠免疫系統,產生較強的免疫反應,并對產生高滴度的抗Tα1抗體有促進作用。ELISA是將抗原、抗體的特異性反應與酶對底物的催化作用相結合的實驗技術，具有特異性強,靈敏度高的優點,在適宜條件下,能準確測定血清抗體效價。由于所制備的抗體與BSA偶聯,因此,在包被液和一、二抗抗體稀釋液中不應包含BSA,本試驗用濃度為5%的脫脂奶粉作封閉,達到較好的效果。本實驗為檢測Tα1表達產物提供了靈敏度高,特異性強的抗體,為Tα1的分離純化及大規模，從而為進一步滿足臨床需要奠定了基礎。
