客戶只需提供樣品和待檢測基因名稱即可。由我們提取RNA,設計并合成引物,完成熒光定量PCR實驗以及后續數據分析,提供實驗報告給您。 產品名稱 | 腺病毒E型探針法熒光PCR檢測試劑盒 | 英文名稱 | Adenovirus(AV) | 貨號 | YSP96350 |
熒光定量PCR試劑盒技術: 產品僅用于科研本實用新型技術公開了一種實時熒光定量PCR試劑盒,包括盒體,盒體由上盒體和下盒體組成,上盒體的底面上設有限位凸起,下盒體的頂面上設有與限位凸起匹配的凹槽,且在下盒體左右側壁的下端均軟連接有側蓋,側蓋遠離下盒體的一端連接有卡勾,下盒體的上端邊緣處設有環形凸起,兩個卡勾分別勾住環形凸起的左右兩端將上盒體固定在下盒體上;凹槽的內部設有固定桿,固定桿上通過轉動件轉動連接有用于放置試管的試管架;下盒體的左右兩側均設置有收納槽。本實用新型技術通過將盒體分為上下組合的兩個部分,并將兩個部分通過側蓋連接,即可保證試劑盒的便攜性,同時使用試劑盒自帶的試管可提高檢測的效率。 樣品RNA的抽提: ①取凍存已裂解的細胞,室溫放置5分鐘使其*溶解。 ②兩相分離 每1ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2ml的,蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體15秒后,15到30℃孵育2到3分鐘。4℃下12000rpm離心15分鐘。離心后混合液體將分為下層的紅色酚相,中間層以及無色水相上層。RNA全部被分配于水相中。水相上層的體積大約是勻漿時加入的TRIZOL試劑的60%。③RNA沉淀 將水相上層轉移到一干凈無RNA酶的離心管中。加等體積異丙醇混合以沉淀其中的RNA,混勻后15到30℃孵育10分鐘后,于4℃下12000rpm 離心10分鐘。此時離心前不可見的RNA沉淀將在管底部和側壁上形成膠狀沉淀塊。 ④RNA清洗 移去上清液,每1mlTRIZOL試劑裂解的樣品中加入至少1ml的75%乙醇(75%乙醇用DEPCH2O配制),清洗RNA沉淀。混勻后,4℃下7000rpm離心5分鐘。 ⑤RNA干燥 小心吸去大部分乙醇溶液,使RNA沉淀在室溫空氣中干燥5-10分鐘。 ⑥溶解RNA沉淀 溶解RNA時,先加入無RNA酶的水40μl用槍反復吹打幾次,使其*溶解,獲得的RNA溶液保存于-80℃待用。 2 RNA質量檢測 1)紫外吸收法測定 先用稀釋用的TE溶液將分光光度計調零。然后取少量RNA溶液用TE稀釋(1:100)后,讀取其在分光光度計260nm和280nm處的吸收值,測定RNA溶液 濃度和純度。 ① 濃度測定 A260下讀值為1表示40 g RNA/ml。樣品RNA濃度(g/ml)計算公式為:A260 ×稀釋倍數× 40 g/ml。 草酸依地普侖/草酸艾司西酞普蘭(標準品)C10H9NO3蔗糖苯甲酸酯 消旋卡多曲C20H20NO42-[(二苯基)硫基]乙酰胺 消旋卡多曲(標準品)C19H16NO4+羥基-甲氧基苯甲 乙酰螺旋霉素C36H60O8氟-羥基苯甲酸 尼羅替尼C6H14N4O2異喹啉-甲酸 尼羅替尼(標準品)C17H16O4N-(2-乙基)鄰苯二甲酰亞胺 螺旋霉素C17H18O42-甲氧基-(4,4,5,5-四甲基-1,3,2-二雜氧戊烷-2-基)吡啶 螺旋霉素(標準品)C16H16O6無水三氯化鉻 螺內酯C22H28O6溴-2-氟-6-硝苯 螺內酯(標準品)C41H64O13溴甲酯 卡馬西平C32H40O8羥基異惡唑-5-甲酸甲酯 卡馬西平(標準品)C30H52O4氟-甲氧基苯甲 卡鉑C27H38O6芐基溴 卡鉑(標準品)C40H58N8O8三苯基鉍 硫酸長春新堿/硫酸基長春堿C22H34O75-甲氧基吡啶-2-羧酸 硫酸長春新堿/硫酸基長春堿(標準品)C20H32O6甲基吡啶-酸 帕唑帕尼C22H34O71-Boc-哌啶 非洛地平/非氯地平C20H22N2O2N-羥基-異丁酰胺 腺病毒E型探針法熒光PCR檢測試劑盒羥脯氨酸(Hyp)ELISA試劑盒ATF6 活化轉錄因子6抗體100 ul 前心鈉肽(Pro-ANP)ELISA試劑盒ATP4B 氫鉀ATP酶通道蛋白抗體1 Kit 前列腺特異性抗原(PSA)ELISA試劑盒ATP5J ATP5J抗體100 ul 前列腺酸性磷酸酶(PAP)ELISA試劑盒ATP7A 銅轉運蛋白質α鏈抗體100 ul G/H合酶1(PTGS1)ELISA試劑盒ATRN 吸引素抗體20 ul F(PGF)ELISA試劑盒phospho-ATR/ACTR(Ser428) 磷酸化ATR抗體10 mg E2合成酶(PGES)ELISA試劑盒ATP7B 銅轉運蛋白質β鏈抗體100 ul E2(PGE2)ELISA試劑盒ATP1b2/Na+K+ATPase 鈉鉀ATP酶通道蛋白抗體100 ul E1(PGE1)ELISA試劑盒Phospho-Na,K-ATPase alpha-1 (Tyr10) 磷酸化鈉鉀ATP酶蛋白a1抗體300 ul 實驗過程: 一、試劑準備 1. DNA模板 2.對應目的基因的特異引物(在PCR反應中,新合成的DNA是要接在一小段序列上才能繼續按照模板DNA復制,而不能從無到有,憑空合成。這一小段序列就是你所要有設計的引物。可以是DNA也可以是RNA,一般20多bp,需要根據你的模板鏈設計。因此,擴增不同的基因需要設計不同的引物) 3.10×PCR Buffer 4.2mM dNTPmix:含dATP、dCTP、dGTP、dTTP各2mM 5.Taq酶 二、操作步驟 1.在冰浴中,按以下次序將各成分加入一無菌0.5ml離心管中。 10×PCR buffer 5μl dNTP mixl 4μl 引物1(10pM) 2μl 引物2(10PM) 2μ Taq酶(2U/μl) 1μl DNA模板(50ng-1μg/μl) 1 μl 加ddH2O至 50 μl 視PCR儀有無熱蓋,不加或添加石蠟油。 2.調整好反應程序。將上述混合液稍加離心,立即置PCR儀上,執行擴增。一般:在93℃預變性3-5min,進入循環擴增階段:93℃ 40s → 58℃ 30s → 72℃ 60s,循環30-35次,后在72℃ 保溫7min。 3.結束反應,PCR產物放置于4℃待電泳檢測或-20℃長期保存。 4.PCR的電泳檢測:如在反應管中加有石蠟油,需用100μlLuFang進行抽提反應混合液,以除去石蠟油;否則,直接取5-10μl電泳檢測 三、注意事項 1.PCR反應應該在一個沒有DNA污染的干凈環境中進行。好設立一個的PCR實驗室。 2.純化模板所選用的方法對污染的風險有影響。一般而言,只要能夠得到可靠的結果,純化的方法越簡單越好。 3.產品僅用于科研所有試劑都應該沒有核酸和核酸酶的污染。操作過程中均應戴手套。 |